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乙烯响应因子ERF参与转基因菊花水培低氧胁迫耐受性的调控.pdf

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乙烯响应因子ERF参与转基因菊花水培低氧胁迫耐受性的调控.pdf

<p>园艺学报, 2018, 45 (1): 109 116. Acta Horticulturae Sinica &nbsp; doi: 10.16420/j.issn.0513-353x.2017-0184; http: /www. ahs. ac. cn &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;109 收稿日期 : 2017 05 11; 修回日期 : 2017 12 12 基金项目 : “十二五”农村领域国家科技计划课题( 2013AA102700) ;国家自然科学基金青年基金项目( 31401909) ;曹光彪高科技发展基金项目 &nbsp;* 通信作者 &nbsp;Author for correspondence( E-mail: akunzju.edu.cn) &nbsp;乙烯响应因子 ERF 参与转基因菊花水培低氧胁迫耐受性的调控 &nbsp;刘晓芬,向理理,殷学仁,李 &nbsp;方,陈昆松*(浙江省园艺作物整合重点实验室,浙江大学农业与生物技术学院,杭州 &nbsp;310058) &nbsp;摘 &nbsp;要: 将参与柿果实低氧胁迫响应的异源基因 DkERF9 转化到切花菊九月九植株中,经 PCR检测,获得了 5 株过量表达( 35S DkERF9)的阳性植株。进一步比较分析了 35S DkERF9 植株与野生型植株的耐淹水性,发现水培低氧胁迫处理 2 周后, 35S DkERF9 植株较野生型植物生长缓慢,根系生长和茎的伸长均受到显著抑制,叶片颜色较淡;移除水培低氧胁迫处理 3 周后,生长部分恢复,但是叶片颜色及整体长势均弱于野生型植株。 &nbsp;关键词: 菊花; ERF;涝害;低氧胁迫;遗传转化 &nbsp;中图分类号: S 682.1+1 &nbsp; &nbsp; &nbsp; 文献标志码: A &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;文章编号: 0513-353X( 2018) 01-0109-08 Ethylene Responsive Factors ERF Regulated the Hypoxia Response of Transformed Chrysanthemum Lines LIU Xiaofen, XIANG Lili, YIN Xueren, LI Fang, and CHEN Kunsong*( Zhejiang Provincial Key Laboratory of Horticultural Plant Integrative Biology, College of Agriculture &amp; Biotechnology,Zhejiang University, Hangzhou 310058, China) &nbsp;Abstract: The exogenous DkERF9, a reported hypoxia responsive gene from persimmon, was transformed into Jiuyuejiu chrysanthemum. Five positive lines( 35S:DkERF9) were obtained and verified with PCR. Compared to the wild type plants, the growth of 35S:DkERF9 lines were inhibited significantly by water planting treatments for two weeks, as the length of roots and shoots were shorter in 35S:DkERF9 lines. The differences between 35S:DkERF9 lines and wild type plants remain significant,after three weeks recovery. Keywords: chrysanthemum; ERF; waterlogging; hypoxia; transformation 菊花( Chrysanthemum morifolium Ramat.)是浅根、旱作观赏花卉,忌水涝(尹冬梅, 2011) 。中国南方地区雨量充沛,尤其是在梅雨季节往往因为降雨次数多、强度大、土壤粘重、排水不良而出现水涝胁迫,使菊花的品质受到严重影响,甚至因涝害致死(尹冬梅, 2011) 。 &nbsp;水涝导致土壤中氧气供应不足,造成低氧胁迫,抑制植株生长( Yin et al., 2012) 。在水涝过程 &nbsp;Liu Xiaofen, Xiang Lili, Yin Xueren, Li Fang, Chen Kunsong. Ethylene responsive factors ERF regulated the hypoxia response of transformed chrysanthemum lines. 110 &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;Acta Horticulturae Sinica, 2018, 45 (1): 109 116. 中,植物体内乙烯含量增加,是其对低氧胁迫的一种生态适应性反应(尹冬梅, 2011) 。目前已知模式植物拟南芥中至少有 4 个乙烯响应因子 ( ethylene response factor, ERF) 成员, 即 AtHER1、 AtHER2、AtRAP2.2 和 AtRAP2.12,参与植株低氧耐性的调控 ( Hinz et al., 2010; Yang et al., 2011; Gasch et al.,2016; Paul et al., 2016) 。在菊花植株中, ERF 成员是否同样可参与低氧胁迫的调控,尚不清楚。 &nbsp;由于菊花高度杂合的特点,其常规杂交育种存在不确定性(成丽娜 &nbsp;等, 2013) 。近年来菊花转基因育种获得较大发展,主要集中在观赏性状、花朵开放、抗病性及抗虫性和非生物胁迫耐性等方面( Brugliera et al., 2013;成丽娜 &nbsp;等, 2013) ,其中非生物胁迫耐性改良育种主要集中在对高温、低温和盐胁迫等的抗性( Hong et al., 2006a, 2006b, 2009; Chen et al., 2011, 2012) ,但针对菊花耐涝性相关的遗传转化鲜有报道。 &nbsp;Min 等 ( 2012) 发现柿果实 DkERF9 可增强丙酮酸脱羧酶编码基因 DkPDC2 启动子的转录活性,从而促进乙醛含量增加。乙醛可在脱氢酶 ADH 的催化下生成乙醇( Loreti et al., 2016) ,若大量积累可对植株产生毒害效应。据此推测 DkERF9 可负向调节植物低氧胁迫响应。 &nbsp;为验证这一推论,本研究构建了九月九切花菊品种的遗传转化体系,并获得 35S:DkERF9转基因植株。分析其影响菊花对水涝低氧耐性的作用,为后续挖掘菊花同源 ERF,改良抗涝性奠定基础。 &nbsp;1 &nbsp;材料与方法 &nbsp;1.1 &nbsp;植物材料 &nbsp;供试菊花九月九品种地下茎芽材料于 2014 年采自浙江省新昌丰岛花卉基地,并在浙江大学果树所组培室经表面消毒后培养成无菌苗,培养条件为 16 h/8 h 光暗周期、温度 25 。 &nbsp;1.2 &nbsp;遗传转化体系的建立 &nbsp;将柿果实乙烯响应因子 DkERF9( GenBank JX117848)搭载到双元表达载体 pGreen SK 的多克隆位点中,构建过表达质粒 pGreen SK:DkERF9。进而将质粒电转到 EHA105 农杆菌菌株中,以无菌苗的叶片及其部分叶柄为外植体进行遗传转化。 农杆菌浸染浓度为 OD600= 0.6 0.8, 浸染 10 min。筛选培养基为 MS + 1.0 mg · L-16-BA + 0.5 mg · L-1NAA + 10 mg · L-1Kan + 50 mg · L-1 Meropenem的再生培养基。 &nbsp;待不定芽伸长生长至 1 cm 以上时,转至诱根培养基 MS + 10 mg · L-1Kan 和 50 mg · L-1Meropenem。待植株根系生长至 2 cm 以上时,将其移栽到基质(泥炭土 珍珠岩 蛭石 草木灰 &nbsp;= 5 1 1 1)中,覆透光保湿的塑料薄膜,炼苗培养 7 d。培养箱条件为 16 h/8 h 光暗周期,昼夜温度25 /20 ,相对湿度 60%。 &nbsp;1.3 &nbsp;阳性植株 PCR 检测 &nbsp;切取约 0.1 g 的转基因菊花组培苗叶片,经液氮冷冻后研磨成粉,选用 TPS 试剂结合水浴法提取基因组 DNA。以 DkERF9 目标基因特异序列克隆引物(表 1) ,选用 Phanta®Super-Fidelity DNA Polymerase( Vazyme,中国)结合 PCR 技术扩增植株中目标基因。以野生型植株 DNA 为阴性对照,电泳分析转基因植株中目标基因 DkERF9 的整合情况。 &nbsp;刘晓芬,向理理,殷学仁,李 &nbsp; 方,陈昆松 . 乙烯响应因子 ERF 参与转基因菊花水培低氧胁迫耐受性的调控 . 园艺学报, 2018, 45 (1): 109 116. &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;111 表 1 &nbsp;研究所用引物列表 &nbsp;Table 1 &nbsp;Primer sequences used in this study 用途Test 引物名称 &nbsp; Primer &nbsp;序列 &nbsp; Sequence &nbsp;35: DkERF9 阳性株检测 Test the positive 35S:DkERF9 DkERF9-T-FP GTCGCCTCAGAAAGCCAAAAGGC DkERF9-T-RP TCATCCAGCAGCTTCACATTCTTC DkERF9 表达检测 Test the DkERF9 expression patterns DkERF9-Q-FP CAGATCAGCGGCTTGATTTC ERF9-Q-RP TAGGCATCAACTTCGGCATC 实时定量 PCR 内参基因引物 The reference gene used in real-time PCR CmACT-Q-FP CACCCCCAGAGAGAAAATAC CmACT-Q-FP ATCTGTTGGAAGGTGCTGAG 切取约 0.1 g 的转基因菊花组培苗叶片,经液氮冷冻后研磨成粉,选用 TRIZOL( Invitrogen,中国)试剂提取叶片总 RNA。 &nbsp;应用 DNase( Fermentas, USA)消除 RNA 中潜在的基因组 DNA。吸取 1 g RNA 逆转录合成 cDNA( Bio-rad, USA) 。 选用 SsoFast Eva Green supermix( Bio-rad, USA) , 结合目标基因 DkERF9的实时定量 PCR 引物, 分析 35S:DkERF9 植株中基因表达。 以野生型植株组培苗 RNA 为阴性对照,设置 CmACT 为内参,计算 DkERF9 相对表达量。每株野生型和 35:DkERF9 植株取 3 个样品,分别检测基因表达情况。 &nbsp;1.4 &nbsp;阳性植株二次生根验证 &nbsp;选取成功诱导生根的阳性植株,切取其带有 2 片嫩叶的茎尖,置于 MS + 25 mg · L-1Kan + 50 mg · L-1Meropenem 培养基中继续诱根培养 7 14 d,观察根系的生长状况,确认其遗传转化成功的可信性。 &nbsp;1.5 &nbsp;植株水培低氧胁迫处理及生长指标 &nbsp;选取带 4 片叶片且长势相同的野生型和 35S:DkERF9 组培苗,炼苗后将根系置于盛满水的组培盒(锡箔包裹)中至底部第 1 片叶片接近水位,重新置于培养室内培养 14 d。水培(低氧胁迫)处理后,将植株重新栽培于基质中进行恢复培养。 &nbsp;测量低氧胁迫后植株整株质量、地上部茎长和根长。 &nbsp;2 &nbsp;结果与分析 &nbsp;2.1 &nbsp;35S:DkERF9 转基因植株的获得 &nbsp;将无菌苗(图 1, A)制备外植体,经过含 35S:DkERF9 表达质粒的 EHA109 农杆菌浸染转化后,移至筛选培养基进行不定芽诱导, 14 d 后外植体发黄变软,切口处形成愈伤组织(图 1, B) ;继续培养 28 d 后,愈伤组织则分化出较多不定芽或者形成芽点(图 1, C) ;待不定芽生长至 1 cm以上时,将其切离外植体并置于 MS + 10 mg · L-1 Kan + 50 mg · L-1Meropenem 的培养基上进行生根诱导(图 1, D) ,获得了多个潜在的 35S:DkERF9 植株。 &nbsp;Liu Xiaofen, Xiang Lili, Yin Xueren, Li Fang, Chen Kunsong. Ethylene responsive factors ERF regulated the hypoxia response of transformed chrysanthemum lines. 112 &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;Acta Horticulturae Sinica, 2018, 45 (1): 109 116. 图 1 &nbsp;35S:DkERF9九月九菊花遗传转化体系构建 &nbsp;A:无菌苗培育; B:外植体筛选培养 14 d 后长势; C:外植体筛选培养 28 d 后长势; &nbsp;D:抗性苗根诱导培养。 &nbsp;Fig. 1 &nbsp;The 35S:DkERF9 Jiuyuejiu chrysanthemum transformation was showed with &nbsp;the photos in different cultural time A: The aseptic seedling culture; B: The selective culture of explants for 14 days; C: The selective culture of &nbsp;explants for 28 days; D: The root culture of the adventitious buds. PCR 电泳检测结果(图 2)显示,有 5 株基因组 DNA 中呈现 DkERF9 特异序列条带,而野生型植株( WT)基因组 DNA 中则无目标条带,有些植株则为假阳性。 &nbsp;图 2 &nbsp;目标基因 DkERF9 在九月九菊花中遗传转化 PCR 检测 &nbsp;Fig. 2 &nbsp;Transformation of DkERF9 into Jiuyuejiu chrysanthemum was detected by PCR 进一步分析 5 株 35S:DkERF9 植株中目标基因 DkERF9 的相对表达量,结果(图 3)发现,其DkERF9 的相对表达量显著上调,其中 Line4 和 Line7 中表达量最高, Line8 中 DkERF9 的表达量则相对较低,而野生型植株( WT)则无表达。 &nbsp;刘晓芬,向理理,殷学仁,李 &nbsp; 方,陈昆松 . 乙烯响应因子 ERF 参与转基因菊花水培低氧胁迫耐受性的调控 . 园艺学报, 2018, 45 (1): 109 116. &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;113 图 3 &nbsp;35S:DkERF9 植株中 DkERF9 表达的 RT-PCR 分析 &nbsp;Fig. 3 &nbsp;The transcript levels of DkERF9 in 35S:DkERF9 transgenic lines were analyzed with real-time PCR 2.2 &nbsp;应用二次生根方法再次确认目标基因 DkERF9 在 35S:DkERF9 植株中的表达 &nbsp;为了确保每批次扩繁的 35S:DkERF9 植株中目标基因不丢失,所有用于后续处理的组培苗均经过抗生素选择压再次诱根。结果(图 4)显示, 5 株 35S:DkERF9 植株的茎尖在含有 Kan 的选择培养基中均能在 7 d 左右快速生根。进一步说明 DkERF9 稳定存在于 35S:DkERF9 植株基因组中。 &nbsp;图 4 &nbsp;应用二次生根法验证目标基因 DkERF9 存在于阳性转基因菊花基因组中 &nbsp;Fig. 4 &nbsp;Verification of DkERF9 existing in the genome of the positive transgenic lines 2.3 &nbsp;水培低氧胁迫处理显著抑制 35S:DkERF9 菊花植株的长势 &nbsp;本研究中发现,野生型和 5 个 35S:DkERF9 株系植株经水培低氧胁迫处理 14 d 后,长势均受到影响(图 5) :野生型植株虽然叶片数量增加明显,但是基部叶片出现失绿萎蔫现象;与野生型相比,5 个 35S:DkERF9 株系植株叶片增长均被显著抑制,其中 Line7 和 Line4 极为显著, Line8 尽管叶片数量有所增加,但是叶片却呈浅绿色,这与尹冬梅( 2011)的研究结果一致。其余 4 株不仅叶片数量增加缓慢,部分叶片甚至变成褐色。 &nbsp;水培低氧胁迫处理同时显著抑制 35S:DkERF9 植株茎和根的生长(图 5) 。处理 14 d 后,野生型植株茎伸长为 12.5 cm,而 5 株 35S:DkERF9 植株 Line8、 Line3、 Line2、 Line7 和 Line4 的茎长则Liu Xiaofen, Xiang Lili, Yin Xueren, Li Fang, Chen Kunsong. Ethylene responsive factors ERF regulated the hypoxia response of transformed chrysanthemum lines. 114 &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;Acta Horticulturae Sinica, 2018, 45 (1): 109 116. 分别为 4.5、 3.5、 3.0、 2.5 和 1.8 cm,仅为野生型植株的 16% 30%。处理 2 周后,野生型植株根系伸长为 20 cm,且有大量的须根生成。 Line8、 Line3、 Line2、 Line7 和 Line4 的根长则分别为 11、 13、13、 10.5 和 8.0 cm,且须根生成的数量远远少于野生型植株。 &nbsp;此外, 5 株 35S:DkERF9 菊花植株鲜样质量的增长亦被水培低氧胁迫处理所抑制。在低氧胁迫处理 2 周后,野生型植株鲜样质量为 1.8 g,而 5 株 35S:DkERF9 植株的鲜样质量则仅为野生型的10% 45%。 &nbsp;图 5 &nbsp;水培低氧胁迫对 35S:DkERF9 植株叶片和根系生长的影响 &nbsp;Fig. 5 &nbsp;The effect of water planting on the leaves and roots development of 35S:DkERF9 transgenic lines 2.4 &nbsp;移除水培低氧胁迫处理后 35S:DkERF9 菊花植株的生长情况 &nbsp;水培低氧胁迫处理 14 d 后,将野生型和 35S:DkERF9 植株重新栽培于基质中,维持正常的水肥管理,恢复生长 21 d。除 Line4 在此期间死掉外,其余植株整体长势良好,叶片伸展面积增大,色泽均匀。然而与野生型相比, 4 个 35S:DkERF9 株系植株叶片伸展较小,且色泽呈现浅绿色或黄绿色,而且其茎的伸长亦短于野生型(图 6) ,整体长势滞后于野生型。 &nbsp;图 6 &nbsp;转基因各株系植株在水培低氧胁迫处理后恢复 21 d 后的生长状况比较 &nbsp;Fig. 6 &nbsp;The growth status of wild type plants and 35:DkERF9 lines after 21 days in the normal growth condition 刘晓芬,向理理,殷学仁,李 &nbsp; 方,陈昆松 . 乙烯响应因子 ERF 参与转基因菊花水培低氧胁迫耐受性的调控 . 园艺学报, 2018, 45 (1): 109 116. &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;115 3 &nbsp;讨论 &nbsp;淹水、涝害等非生物胁迫可直接或间接的影响植物生理代谢,抑制其生长,甚至致死。多数研究表明, 淹水会导致植物根系导水性能损坏 ( Jackson &amp; Drew, 1984) , 植株萎蔫 ( Parent et al., 2008) ,叶片叶绿素含量降低(齐琳 &nbsp;等, 2015)等。本研究中淹水可极显著的抑制 35S:DkERF9 菊花植株根系的生长,以及叶片颜色。 &nbsp;对于耐涝性强的物种,可通过改变不同器官的组织形态来适应逆境胁迫。 Yin 等( 2012)研究发现淹水 10 d 后,耐涝物种紫花野菊叶片上下表皮、栅栏组织和海绵组织等厚度均有所增加,其中栅栏组织与海绵组织厚度的比值亦较对照上升 40%;根系皮质组织中细胞间隙的空间亦增大为对照的 8.9 倍。进一步分析发现,淹水时紫花野菊根系中乙醇脱氢酶( ADH)和丙酮酸脱羧酶( PDC)活性仅有瞬时的增强,然而不耐涝的菊花脑中此两种酶的活性则是持续增强( Yin et al., 2013) 。 &nbsp;在植物体内, PDC 和 ADH 可分别催化丙酮酸和乙醛生成乙醇( Loreti et al., 2016) ,而较高浓度的乙醇则显著抑制植物根系的生长,甚至致死( Yin et al., 2013) 。柿果实 DkERF9 可显著增强DkPDC2 启动子活性,进而增强 DkPDC2 酶活性,调控柿果实对低氧胁迫的响应( Min et al., 2012) 。当 DkERF9 在菊花植株中过量表达时,推测菊花体内 PDC 酶会维持较高的活性,此是 35S:DkERF9菊花植株淹水处理时生长受抑制的主要原因。然而这一推论尚需后续验证。 &nbsp;后续研究可挖掘与抗涝性相关的菊花同源 ERF 成员,分析其调控机制,进而达到改良菊花耐涝性的目标。 &nbsp;References Brugliera F, Tao G Q, Tems U, Kalc G, Mouradova E, Price K, Stevenson K, Nakamura N, Stacey I, Katsumoto Y, Tanaka Y, Mason J G. 2013. Violet/blue chrysanthemums-metabolic engineering of the anthocyanin biosynthetic pathway results in novel petal colors. Plant and Cell Physiology, 54: 1696 1710. Chen Lin, Chen Yu, Jiang Jia-fu, Chen Su-mei, Chen Fa-di, Guan Zhi-yong, Fang Wei-min. 2012. The constitutive expression of Chrysanthemum dichrumICE1 in Chrysanthemum grandiflorum improves the level of low temperature, salinity and drought tolerance. Plant Cell Reports, 31:1747 1758. Chen Su-mei, Cui Xin-li, Chen Yu, Gu Chun-sun, Miao Heng-bin, Gao Hai-shun, Chen Fa-di, Liu Zhao-lei, Guan Zhi-yong, Fang Wei-min. 2011. CgDREBa transgenic chrysanthemum confers drought and salinity tolerance. Environmental and Experimental Botany, 74: 255 &nbsp;260. Cheng Li-na, Wei Qian, Muhammad Imtiaz, Gao Jun-ping, Hong Bo. 2013. Advances in application of transgenic breeding technology in the traits improvement of Chrysanthemum. Acta Horticulturae Sinica, 40: 1813 1825. (in Chinese) 成丽娜,魏 &nbsp; 倩, Muhammad Imtiaz,高俊平,洪 &nbsp; 波 . 2013. 转基因育种技术在菊花性状改良中的应用进展 . 园艺学报, 40: 18131825. Gasch P, Fundinger M, Müller J T, Lee T, Bailey-Serres J, Mustroph A. 2016. Redundant ERF-VII transcription factors bind to an evolutionarily conserved cis-motif to regulate hypoxia-responsive gene expression in Arabidopsis. The Plant Cell, 28: 160 180. Hinz M, Wilson I W, Yang J, Buerstenbinder K, Llewellyn D, Dennis E S, Sauter M, Dolferus R. 2010. Arabidopsis RAP2.2: an ethylene response transcription factor that is important for hypoxia survival. Plant Physiology, 153: 757 772. Hong Bo, Ma Chao, Yang Ying-jie, Wang Ting, Yamaguchi-Shinozaki K, Gao Jun-ping. 2009. Over-expression of AtDREB1A in chrysanthemum enhances tolerance to heat stress. Plant Molecular Biology, 70: 231 240. Hong Bo, Tong Zheng, Ma Nan, Kasuga M, Yiamaguchi-Shinozaki K, Gao Jun-ping. 2006b. Heterologous expression of the AtDREB1A gene in transgenic chrysanthemum enhances tolerance to low temperature. 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